Histopathological and molecular methods as complementary diagnostic in case of lymphadenopathies suggestive of bovine tuberculosis
DOI:
https://doi.org/10.12834/VetIt.2157.19159.3Keywords:
Bovine tuberculosis, Post mortem inspection, Lymphadenopathy, Brazil, Gross examination, PCRAbstract
Bovine tuberculosis (TB) is a chronically evolving zoonotic infectious disease caused by Mycobacterium bovis. Anatomopathological examination during post mortem inspection in bovines is the main resource engaged in sanitary slaughter; however, it is very troublesome since many granulomatous inflammatory processes have similar morphological characteristics. Thus, this study aims to use complementary diagnosis methods (histopathological and polymerase chain reaction – PCR assays) to confirm the macroscopic assessment of lymphadenopathies indicative of tuberculosis in bovines slaughtered in a refrigerated slaughterhouse in Tailândia city, PA, Brazil. Fifty‑one samples were collected from lesions indicative of tuberculosis in pre‑scapular and pre‑pectoral lymph nodes (or different lymphadenitis) in condemned carcasses. Histological processing employed routine techniques carried out at the Laboratory of Animal Pathology of the Federal Rural University of the Amazon, while the PCR assay was performed at the Bacteriology Laboratory of the Evandro Chagas Institute. Results showed that 1.96% of the histopathology samples corresponded to inflammatory processes typical of TB and that, in PCR, 4.25% of the samples had the amplification profile of the M. bovis species. These results indicate the importance of adding complementary methods to assist the sanitary inspection line and make inspection more efficient in its decisions.
References
Alzamora Filho, F., Reis, V.M., Fehlberg, I., Alcântara, A.C., Cavalcante, M.., Rocha, V.C.F. & Costa, J.N. 2014. Identificação de Mycobacterium bovis em carcaças de bovinos abatidos no estado da Bahia, Brasil, por métodos bacteriológico e molecular. Arq. Bras. Med. Veterinária e Zootec. 66, 1585–1591. https://doi.org/10.1590/1678-6640
Araújo, C.P., Leite, C.Q.F., Prince, K.A., Jorge, K.S.G. & Osório, A.L.A.R. 2005. Mycobacterium bovis identification by a molecular method from post-mortem inspected cattle obtained in abattoirs of Mato Grosso do Sul, Brazil. Mem. Inst. Oswaldo Cruz 100, 749–752. https://doi.org/10.1590/S0074-02762005000700013
Bermudez, H.., Renteria, B.G., Hori-Oshima, S., Valle, D.L.M.V., Lopez, V.G., WL;, Y., Pio, G.R., Pujol, C. &Nielsen, K. 2010. Correlation bettween histopathological, bacteriological and PCR diagnosis of bovine tuberculosis. J. Anim. Vet. Adv. 15, 2082–2084.
Brasil, 2007. Regulamento de Inspeção Industrial e Sanitária de Produto de Origem Animal (RIISPOA). Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento, Brasília.
Brasil, 2006. Programa Nacional de Controle e Erradicação da Brucelose e Tuberculose Animal (PNCEBT). Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento, Brasília.
Corner, L.A. 1995. Post mortem diagnosis of Mycobacterium bovis infection in cattle. Vet. Microbiol. 40, 53–63.
Corner, L.A., Melville, L., McCubbin, K., Small, K.J., McCormick, B.S., Wood, P.R. & Rothel, J.S. 1990. Efficiency of inspection procedures for the detection of tuberculous lesions in cattle. Aust. Vet. J. 67, 389–392.
Costa, A.C.F. 2008. Tuberculose bovina: diagnóstico anatomo-histopatológico, bacteriológico e molecular em animais abatidos na Região Metropolitana de Salvador, Bahia. Universidade Federal da Bahia.
Costa, A.F.C., Silva, N.S., Rocha, V.C.M., Rosales Rodriguez, C.A., Estrela-Lima, A., Moreira, E.L.T., Madruga, C., Arruda, S.M., Ferreira Neta, J.S., Silva, M.C.A. & Oliveira, D.E.M. 2010. Tipificação genética, através da técnica de spoligotyping, de Isolados de Mycobacterium bovis em animais abatidos na Região metropolitana de salvador, Bahia, Brasil. Arq. Inst. Biológico 77, 233–237.
Cousins, D.V., Huchzermeyer, H.F.K.A. & Griffin, J.F.T. 2004. Infectious diseases of livestock, in: Coetze, r J.A.W., Tustin, R.C. (Eds.), Tuberculosis. Oxford, Inglaterra, pp. 1973–1993.
Fráguas, S.A., Cunha-Abreu, M.S., Ferreira, A.M.R., Marassy, C.D., Oelemann, W., Fonseca, L.S., Ferreira, R. & Lilenbaum, W. 2008. Estudo comparativo de métodos complementares para o diagnóstico da tuberculose bovina em animais reagentes à tuberculinização. Rev. Bras. Ciência Veterinária 15, 117–121.
França, L.R., Cruz, J.F., Neves, V.B.F. & Cerqueira, R.B. 2013. Prevalência e histopatologia de lesões sugestivas de tuberculose em carcaça de bovinos abatidos no Sudoeste da Bahia. Rev. Bras. Saúde e Produção Anim. 14, 721–733.
Furlanetto, L.V., Figueiredo, E.E.S., Conte Júnior, C.A., Carvalho, R.C.T., Silva, F.G.S., Silva, J.T., Lilenbaum, W. & Paschoalin, V.M.F. 2012a. Uso de métodos complementares na inspeção post mortem de carcaças com suspeita de tuberculose bovina. Pesqui. Veterinária Bras. 11, 1138–1144.
Furlanetto, L.V., Figueiredo, E.E.S., Conte Junior, C.A., Silva, F.G.S., Duarte, R.S., Silva, J.T., Lilenbaum, W. & Paschoalin, V.M.F. 2012b. Prevalência de tuberculose bovina em animais e rebanhos abatidos em 2009 no estado de Mato Grosso, Brasil. Arq. Bras. Med. Veterinária e Zootec. 64, 274–280.
Leal, P.V., Pupin, R.C., Santos, A.C., Faccin, T.C., Surdin, E., Leal, C.R.B., Brumatti, R.C. & Lemos, R.A.A. 2014. Estimativas de perdas econômicas causadas por reação granulomatosa local após uso de vacina oleosa contra febre aftosa em bovinos de Mato Grosso do Sul. Pesqui. Veterinária Bras. 34, 738–742.
Lilenbaum, W. 2000. Atualização em Tuberculose Bovina. Uma mini revisão. Rev. Bras. Med. Veterinária 22, 145–151.
Mendes, R.E., Schneider, A.F., Werlich, D.E., Lucca, N.J., Lorenzett, M.P. & Pilati, C. 2013. Estudo anatomopatológico em tecidos condenados pelo Serviço de Inspeção Federal (SIF) por suspeita de tuberculose. Ciência Anim. Bras. 14, 448–453.
Muller, B., Steiner, B., Bonfoh, B., Fané, A., Smith, N.H. & Zinsstag, J. 2008. Molecular characterisation of Mycobacterium bovis isolated from cattle slaughtered at the Bamako abattoir in Mali. BMC Vet. Res. 4, 1–6.
Neill, S.D., Pollock, J.M., Bryson, D.B. & Hanna, J. 1994. Pathogenesis of Mycobacterium bovis infection in cattle. Vet. Microbiol. 40, 41–52.
Pacheco, A.M., Hamzè, A.L., Rodrigues, C.A., Medeiros, E.S., Favaro, M.R., Melão, M.H., Filadelpho, A.L. & Zappa, V. 2009. Controle da tuberculose bovina. Revista cientifica eletrônica de medicina veterinária. Rev. Cient. eletrônica Med. veterinária.
Radostits, O.M., Gay, C.C., Hinchelifit, K.W. & Constable, P.D. 2006. Veterinary Medicine: A textbook of disease of cattle, sheep, pigs, goats and horses, 10th ed. Saunders Ltd.
Reis, D.O., Almeida, L. & Faria, A.R. 1995. Estudo comparativo entre linfosarcoma, tuberculose e linfadenites inespecíficas ocorridas em bovinos abatidos e a confirmação histológica. Hig. Aliment. 35, 28–30.
Renwick, A.R., White, P.C.L. & Bengis, R.G. 2007. Bovine tuberculosis in Southern African wildlife: a multi-species host-pathogen system. Emerg. Infect. Dis. 4, 529–540.
Riet-Correa, F., Schild, A.L., Lemos, R.A.A. & Borges, J.R.J. 2007. Doenças de Ruminantes e equídeos, 3rd ed. Pallotti, Santa Maria.
Rodriguez, J.G., Mejia, G.A., Del Portillo, P., Patarroyo, M.E. & Murillo, L.A. 1995. Species-specific identification of Mycobacterium bovis by PCR. Microbiology 141, 2131–2138.
Ruggiero, A.P., Ikuno, A.A., Ferreira, V.C.A. & Roxo, E. 2007. Tuberculose bovina: alternativas para o diagnóstico. Arq. Inst. Biol. (Sao. Paulo). 74, 55–65.
Sabedot, M.A., Boetcher, A.V. & Pozza, M.S. 2009. Ocorrência de tuberculose e brucelose em rebanhos na região sudoeste do Paraná. Rev. Científica Eletrônica Med. Veterinária.
Sambrook, J. & Russell, D. 2001. Molecular cloning. A laboratory manual, 3rd ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York.
Souza, R.F.P. 2013. Análise histomorfológica e molecular de lesões granulomatosas sugestivas de tuberculose bovina. Universidade do Estado de São Paulo.
Tizard, I.R. 2002. Imunologia veterinária: uma introdução, 6th ed. Roca, São Paulo.
Veronesi, R. & Focaccia, R. 2004. Tratado de infectologia, 2nd ed. Atheneu, São Paulo.
Wadhwa, D.R. & Mahajan, V. 2006. Bovine tuberculosis with especial reference to its zoonotic significance and control measures. Intas polivet 7, 239–246.
